Identificación de la formación de cordones de Mycobacterium kansassi e implicancia en la microbiología clínica

Jesús Rojas Jaimes; Jorge Giraldo Chávez; Yudit Huyhua Flores; Tatiana Caceres Nakiche

doi:10.20453/rmh.v33i4.4406

Jesús Rojas Jaimes Facultad de Ciencias de la Salud, Universidad Privada del Norte. Lima, Perú. Escuela de Medicina Humana, Universidad Científica del Sur. Lima, Perú https://orcid.org/0000-0002-6910-9341
Jorge Giraldo Chávez Instituto de Enfermedades Tropicales Alexander von Humboldt, Universidad Peruana Cayetano Heredia. Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0002-0390-1336
Yudit Huyhua Flores Instituto de Enfermedades Tropicales Alexander von Humboldt, Universidad Peruana Cayetano Heredia. Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0002-6923-7685
Tatiana Caceres Nakiche Instituto de Enfermedades Tropicales Alexander von Humboldt, Universidad Peruana Cayetano Heredia. Lima, Perú. https://orcid.org/0000-0003-0516-5202

DOI: https://doi.org/10.20453/rmh.v33i4.4406

Palabras clave: Tuberculosis, Mycobacterium, bacteria, enfermedad, virulencia

Resumen

Objetivos: Determinar si la formación de cordones ocurre en la microcolonias de M. kansasii. Material y métodos: Se sembraron en medio solido 7H11, cuatro especies de micobacterias patógenas de alta prevalencia Mycobacterium kansasii, Mycobacterium abscessus, Mycobacterium tuberculosis y Mycobacterium neonarum y se evaluaron hasta por 21 días, realizando complementariamente las coloraciones Ziehl-Neelsen para cada una de ellas. Para observar la presencia de la formación de cordones en las microcolonias, se utilizó microscopia de fase invertida. Resultados: En todas las especies se observó a nivel de las microcolonias la formación de cordones, además se identificó la formación de cordones en etapa temprana por la coloración Zhiel-Nelsen en Mycobacterium kansasii, Mycobacterium abscessus, y Mycobacterium tuberculosis. Conclusiones: Mycobacterium kansasii es capaz de desarrollar cordones a nivel microscópico, por lo que la premisa basada en la formación de cordones por M. tuberculosis como un patrón diferencial de las demás micobacterias deben ser tomadas con cautela.

Referencias

Palomino J, Leao S, Ritacco V. Tuberculosis 2007 From basic science to patient care. Primera edición. Berlin: BourcillerKamps; 2007. (Citado el 18 de octubre del 2020) Disponible en: http://pdf.flyingpublisher.com/tuberculosis2007.pdf

Kremer K, Van Der Werf J, Au B, et al. Vaccine-induced Immunity Circumvented by typical Mycobacterium tuberculosis Beijing Strains. Emerg Infect Dis. 2009; 15(2): 335–339. doi: 10.3201/eid1502.080795

Shiferaw G, Woldeamanuel Y, Gebeyehu M, Demessie D, Lemma E. Evaluation of Microscopic Observation Drug Susceptibility Assay (MODS) Detection of Multidrug-Resistant Tuberculosis (MDR-TB). J Clin Microbiol. 2007; 45(4):1093-7. doi: 10.1128/JCM.01949-06

Moore D, Carlton A, Gilman R, et al. Microscopic-observation drug-susceptibility assay for the diagnosis of TB. N Engl J Med. 2006; 355(15):1539-50. doi: 10.1056/NEJMoa055524

Ernst J, Trevejo-Nuñez G, Banaiee N. Genomics and the evolution, patogénesis and diagnosis of Tuberculosis. J Clin Invest. 2007; 117(7):1738-45. doi: 10.1172/JCI31810

Selvarangan R, Wu W, Nguyen T, et.al. Characterization of a Novel Group of Mycobacteria and Proposal of Mycobacterium sherrisii sp. nov. J Clin Microbiol. 2004; 42(1):52-9. doi: 10.1128/jcm.42.1.52-59.2004

Fregnan G, Smith D, Randall H. Biological and Chemical Studies on mycobacteria relationship of colony morphology to mycoside content for Mycobacterium kansasii and Mycobacterium fortuitum. J Bacteriol. 1961; 82(4):517-27. doi: 10.1128/JB.82.4.517-527.1961

Byrd T, Lyons R. Preliminary Characterization of a Mycobacterium abscessus Mutant in Human and Murine Models of Infection. Infect Immun. 1999; 67(9):4700-7. doi: 10.1128/IAI.67.9.4700-4707.1999

REMEL. Middlebrook 7h11 agar (Thin pour). Lenexa, Kansas, USA: REMEL; 2011. (Citado el 18 de octubre del 2020) Disponible en: https://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/LSG/manuals/IFU1606-PI.pdf

Dorronsoro I, Torroba L. Microbiología de la tuberculosis. An Sist Sanit Navar. 2007; 30(2):67-84.

Sánchez-Chardi A, Olivares F, Byrd T, Julián E, Brambilla E, Luquin M. Demonstration of cord formation by rough Mycobacterium abscessus variants: implications for the clinical microbiology laboratory. J Clin Microbiol. 2011; 49(6):2293-5. doi: 10.1128/JCM.02322-10

Hee-Jae Huh, Su-Young Kim, Byung-Woo Jhun, Sung-Jae Shin, Won-Jung Koh. Recent advances in molecular diagnostics and understanding mechanisms of drug resistance in nontuberculous mycobacterial diseases. Meegid. 2018; 72(1):1-71. doi:10.1016/ j.meegid.2018.10.003

Attorri S, Dumbar S, Clarridge J. Assessment of Morphology for Rapid Presumptive Identification of Mycobacterium tuberculosis and Mycobacterium kansasii. J Clin Microbiol. 2000; 38 (4):1426–29.

Tu H, Chang S, Huaug T, Huaug W, Liu Y, lee S. Microscopic Morphology in Smears Prepared from MGIT Broth Medium for Rapid Presumptive Identification of Mycobacterium tuberculosis complex, Mycobacterium avium complex and Mycobacterium kansasii. Ann Clin Lab Sci. pring 2003; 33(2):179-83.

Moon SM, Park HY, Jeon K, im S-Y, Chung MJ, Huh HJ, et al. Clinical Significance of Mycobacterium kansasii Isolates from Respiratory Specimens. PLoS ONE. 2015; 10(10): e0139621. doi: 10.1371/journal.pone.0139621

Rojas Jaimes J, Giraldo-Chavez J, Huyhua-Flores Y, Caceres-Nakiche T. Identificación de micobacterias en medio solido mediante microscopía de fase invertida y tinción Ziehl-Neelsen. Rev Peru Med Exp Salud Publica. 2018; 35(2):279-84. doi:10.17843/rpmesp.2018.352.3471